Parsitos en los productos de la pesca y

Parásitos en los productos de la pesca y acuicultura Protozoos de interés económico

Sub-reino Protozoa -Phyla: • Sarcomastigophora • Apicomplexa • Microspora • Myxozoa • Ciliophora

Sarcomastigophora • Mastigophora (Flagelados): – Trypanosoma- HI: sanguijuelas (intestino) HD: peces (sangre). – Trypanoplasma- HI: sanguijuelas (intestino) HD: peces (sangre). – Cryptobia- HI: sanguijuelas (intestino) HD: peces (sangre). C. salmositica (truchas y salmones del género Oncorhyncus, carpas, tencas, . . . ) – Ichthyobodo (Costia). Monoxeno. – Hexamita y Spironucleus. Monoxeno. Intestino y vesícula biliar.

Sarcomastigophora: Mastigophora (Flagelados) 2 1 • Ichthyobodo (Costia) necatrix – – – – – Sección histológica de las agallas de un pez con una fuerte infección por Ichthyobodo (Costia). Parásito monoxeno de peces de agua dulce. Los parásitos, piriformes, se hallan unidos al epitelio Fase de vida libre (arriñonada u oval) y fases de la agalla, alimentándose del contenido celular. parásita (piriforme). Se fijan al epitelio a través de un disco adhesivo en el que está el citostoma, alimentándose del contenido celular Producen la “enfermedad de la turbidez de la piel”: velo blanquecino en agallas y piel, anorexia aguda, lesiones, sobre todo en la aleta caudal, y muerte repentina. Asociado a nutrición deficiente, alta densidad de peces y baja calidad del agua (p. H, temperatura, partículas, . . . ). En peces sanos y/o adultos no es dañino. Pero es peligroso en alevines, peces con daños traumáticos o con infecciones previas u otras enfermedades debilitantes. Importante en piscifactorías. Diagnóstico microscópico. Profilaxis: Mantenimiento de unas condiciones óptimas del agua y una buena alimentación. Tratamiento: Baños en solución de formalina (250 ml/m 3, 30 min), de Cl. Na (1 -1, 5 g/L, 20 -30 min) o de acriflavina (10 mg/L, 10 h). Y, siempre, cambio de tanque de cría. Fuente vídeo: http: //www. fishdoc. co. uk/video/fishmovies. htm Fuente foto 1: http: //www. dekoi. info/afbeeldingen/costia. jpg Fuente foto 2: http: //www. fishdoc. co. uk/disease/costia. htm

Sarcomastigophora • Sarcodina (Amebas): – Acanthamoeba polyphaga (intestino, peritoneo y agallas) => Ulceraciones en la córnea => ceguera en hombre. – Schizamoeba (estómago e intestino)

Apicomplexa • Perkinsiosis (enfermedad de dermo) – Perkinsus spp. Muy importante en moluscos. • Coccidiosis – Eimeria subepithelialis. Coccidiosis nodular, en intestino. No grave. – Eimeria carpelli. Enterococcidiosis. Más grave. Destrucción de la mucosa intestinal. Pérdida de peso.

Microspora • Parásitos obligados intracelulares. Sin mitocondria, peroxisomas ni aparato de Golgi. • Transmisión por esporas muy pequeñas, de pared doble, ingeridas por el hospedador. • La espora eclosiona, en respuesta a estímulos externos, y everte un tubo polar hueco (filamento polar) que permite el paso del esporoplasma al interior de la célula hospedadora. • Reproducción asexual en el citoplasma de la célula hospedadora: esquizogonia y esporogonia.

Microspora Fuente: H. Mehlhorn, editor, (2001) Encyclopedic reference of parasitology, vol. 1, Biology, structure, function. 2ª edn , Springer-Verlag, Berlin. .

Microspora: La espora Fuente: http: //www. palaeos. com/Eukarya/Units/Microsporidia. 000. html Esporas típicas de Tetramicra brevifilum Fuente: http: //www. mispeces. com/estudios/patologia/trouw-1/parasitosis_marinas. pdf

Microspora Fuente: http: //www. cdfound. to. it/HTML/bie 1 c. htm

Microspora Lesión producida por Glugea anomala. Sección histológica de un intestino de rodaballo donde se observa un xenoma de Tetramicra brevifilum. Fuente: http: //www. mispeces. com/estudios/patologia/trouw-1/parasitosis_marinas. pdf Fuente: http: //www. abo. fi/instut/fisk/Fin/Parasiter/microspora. htm

• • • Microspora Glugea Nosema Loma Spraguea Ichthyosporidium Pleistophora • • • Tetramicra Microgemma Thelohania Microsporidium Heterosporis cysts: xenomas Se ha sugerido que los peces podrían actuar como fuente de infección humana por especies del género Pleistophora. http: //www. state. me. us/ifw/fishing/fishlab/vol 2 issue 1. htm

Myxozoa • Parásitos de invertebrados y vertebrados poiquilotermos. • Presentan esporas multicelulares con una pared formada por 1 ó 2 valvas, generalmente, que a veces tienen largas protuberancias. • Las esporas se desarrollan en plasmodios (panesporoblasto) que contienen de 1 a 6 cápsulas polares con filamentos polares enrollados. • Cuando las esporas son ingeridas por el hospedador, se unen a la pared intestinal por medio de los filamentos polares, descargando los esporoplasmas que atraviesan dicha pared, se dividen por mitosis y migran a diversos órganos del hospedador. • Cuando las esporas no son ingeridas, pueden entrar en contacto con la piel del pez, inyectando, por medio de los filamentos polares, los esporoplasmas que se dividen por mitosis y migran a distintos órganos del hospedador.

Myxozoa Ciclo de vida de Myxobolus (Myxosoma ) cerebralis trucha gusano tubifícido (anélido), ej. Limnodrilus Fuente: http: //en. wikipedia. org/wiki/Image: Fdl 17 -9 -grey. jpg Fase de triactinomyxon en M. cerebralis CY, citómero; N, núcleo; P, célula pericítica; PF, filamento polar; PK, cápsula polar; S, célula esporogónica; SP, esporoplasma; V, valvas de la espora. Fuente: H. Mehlhorn, editor, (2001) Encyclopedic reference of parasitology, vol. 1, Biology, structure, function. 2ª edn , Springer-Verlag, Berlín.

Myxozoa Ciclo epidemiológico de Myxobolus cerebralis trucha gusano tubifícido, ej. Limnodrilus Fuente: http: //en. wikipedia. org/wiki/Image: Life. Cycle%28 Myxobolus_cerebralis%29. jpg

Myxozoa. Myxobolus cerebralis: agente etiológico de la enfermedad del torneo en truchas y salmones 2 Sintomatología • • Giros en círculo. Ennegrecimiento región caudal. Deformación dorso, mandíbulas y cabeza. Alta mortalidad en peces jóvenes. 1 Fig. 1. Jaw deformity resulting from juvenile infection by Myxobolus cerebralis. Ennegrecimiento de la cola en una trucha arcoiris Deformación de la mandíbula inferior en una trucha arcoiris Deformación de la cola en una trucha de arroyo Imágenes 1 y 2 tomadas de http: //www. state. me. us/ifw/fishing/fishlab/vol 1 issue 2. htm 3 This image (3) is scanned from the collection of Dr. Thomas L. Wellborn, Jr. The collection was donated to the US Fish & Wildlife Service in 1999. http: //en. wikipedia. org/wiki/Image: Deformed_Brook_Trout. jpg

Diagnóstico • • Myxozoa. Myxobolus cerebralis Signos clínicos: Diferenciar de dieta deficiente en triptófano y ácido ascórbico y de contaminación del agua con tóxicos. Cortes histológicos: demostración de esporas en cartílago. Detección de anticuerpos por técnicas inmunológicas. PCR Tratamiento, prevención y control en acuicultura: -Estanques de cemento (no de tierra para evitar los anélidos) -Conducciones de material plástico resistente (evitar entrada de anélidos) -Desinfección periódica de las instalaciones y del agua (filtración, cloración, UV) Espora: Ø 8 -10 µm -Tratamiento de los peces con fumagilina , . . . -Empleo de cepas de peces más resistentes a las infecciones A photomicrograph of the histological changes caused by Myxobolus cerebralis infection of salmonid cartilage, stained with Giemsa. From the collected images of Dr. Thomas L. Wellborn, Jr. http: //en. wikipedia. org/wiki/Image: Whirling_disease_pathology. jpg

Otros Myxozoa Xenomas producidos por infección con Myxobolus subtecalis http: //www. state. me. us/ifw/fishing/fishlab/vol 4 issue 8. htm Agalla de un lucio con xenomas que contienen millones de esporas de Henneguya. http: //www. state. me. us/ifw/fishing/fishlab/vol 4 issue 5. htm • • Myxobolus Kudoa Henneguya Myxidium leei Esporas típicas de Myxidium leei Sección histológica de un intestino de dorada gravemente infectado por Myxidium leei Fuente: http: //www. mispeces. com/estudios/patologia/trouw-1/parasitosis_marinas. pdf

Ciliophora • Ichthyophthirius multifiliis – Ich de agua dulce • Cryptocarion irritans –Ich marino • Trichodina y Trichodinella – Trichodiniasis • Apiosoma y Epistylis – Enfermedad del alevín • Chilodonella – Chilodonelliasis

Ciclo de vida de Ichthyophthirius multifiliis Fuente: H. Mehlhorn, editor, (2001) Encyclopedic reference of parasitology, vol. 1, Biology, structure, function. 2ª edn , Springer-Verlag, Berlín. Fuente de los vídeos: http: //www. fishdoc. co. uk/video/fishmovies. htm 1 ó varios trofontes en o bajo la epidermis. Ø hasta 1 -1, 5 mm Trofozoíto o trofonte Teronte 30 min - 2 días 30 -50 μm Tras 7 -8 h. se forman 256 -1024 tomites Tomites CI, cilios; CV, vacuola contráctil; CW, pared quística en el fondo del estanque; CWS, pared quística en la piel; CY, citostoma; EN, teronte en o bajo epidermis; LC, cilio terminal largo; MA, macronúcleo; MI, micronúcleo; OP, apertura por ruptura de CW; Tomonte 1 hora Fondo del estanque, lecho, . .

Ichthyophthirius multifiliis, agente etiológico de la enfermedad del punto blanco (ich) Sintomatología • Presencia de puntos blancos a modo de pústulas ( 1 mm) por la superficie del pez (1º aletas, 2º resto cuerpo, 3º opérculos y branquias, 4º muerte). El parásito puede atravesar la epidermis pero no la lámina basal (no alcanza la dermis). • Tendencia a rascarse contra objetos. • Natación errática. • Aletas plegadas. Fuentes: http: //www. alaquairum. net/enfermedad_del_punto_blanco. htm (foto superior) http: //www. state. me. us/ifw/fishing/fishlab/vol 3 issue 4. htm (foto inferiro)

Ichthyophthirius multifiliis, agente etiológico de la enfermedad del punto blanco (ich) Diagnóstico • Síntomas clínicos (puntos blancos, . . . ) • Observación de los protozoos en frotis del contenido de un quiste. Fuente: http: //www. alaquairum. net/enfermedad_del_punto_blanco. htm Ichthyophthirius multifiliis. Trofozoítos con macronúcleo o micronúcleo visibles en secciones de tejido (izquierda) y agallas (derecha) de un pez. Fuente: http: //www. cvm. okstate. edu/~users/jcfox/htdocs/clinpara/lst 11_20. htm#img 20

Ichthyophthirius multifiliis, agente etiológico de la enfermedad del punto blanco (ich) Prevención y control Tratamiento • Tras la freza separar los adultos de En baños (tiempo según producto). los tanques de desove (para evitar • • Quinina o tripaflavina contra la fase tomite/teronte. Formalina, azul de metileno, cloramina o verde malaquita para las fases tomonte y trofonte (trofozoíto). • • • que si hay adultos infectados contaminen el tanque). Tras 5 -6 días llevar alevines a los tanques de engorde (antes que una nuevas generaciones de parásitos les ataquen). Si los hay, eliminar los peces salvajes (pueden venir infectados). Tratamiento con radiaciones UV del agua de los tanques (agua muy clara y muy transparente al UV).

Prevención general en acuicultura • Mantenimiento de unas condiciones óptimas del agua (p. H, temperatura, salinidad, materia orgánica, contaminantes químicos o biológicos, . . . ). • Limpieza exhaustiva y desinfección periódica de los tanques • Alimentación equilibrada y variada. • Densidades no demasiado elevadas de peces. • Vigilancia para la detección precoz de infecciones e instauración inmediata de las medidas de control. • Evitar el estrés de los peces. • Evitar la introducción de peces salvajes (pueden traer infecciones).