Transcrio do RNA em Organismos Procariotos 1 Aspectos

  • Slides: 31
Download presentation
Transcrição do RNA em Organismos Procariotos 1 -Aspectos Gerais 2 -RNA Polimerase DNA Dependente

Transcrição do RNA em Organismos Procariotos 1 -Aspectos Gerais 2 -RNA Polimerase DNA Dependente 3 -Região Promotora 4 -Transcrição em E. coli 5 -m. RNA policistrônico Edmar Vaz de Andrade www. ufam. edu. br/~edandrade

1 -Aspectos Gerais Comparação entre os processos de transcrição e replicação • Replicação do

1 -Aspectos Gerais Comparação entre os processos de transcrição e replicação • Replicação do DNA • Direção da síntese: 5’-3’ • Cromossomo inteiro é copiado • Requer iniciador • As duas fitas da dupla hélice são copiadas • Transcrição do RNA • Direção da síntese: 5’-3’ • Segmentos gênicos são copiados • Não requer iniciador • Somente uma fita serve como molde em um dado momento

1 -Aspectos Gerais • Tipos de RNAs transcritos – m. RNA: codifica a seqüência

1 -Aspectos Gerais • Tipos de RNAs transcritos – m. RNA: codifica a seqüência de aminoácidos de cadeias polipeptídicas. – t. RNA: transporta um aminoácido específico durante a síntese protéica. – r. RNA: interage com proteínas constituindo os ribossomos (maquinário da síntese protéica). – RNAs reguladores: regulação de diferentes processos celulares

2 -RNA Polimerase DNA Dependente Bolha de transcrição Fita codificadora RNA polimerase Re-anelamento Desanelamento

2 -RNA Polimerase DNA Dependente Bolha de transcrição Fita codificadora RNA polimerase Re-anelamento Desanelamento Fita molde DNA-RNA híbrido, 8 pb Sítio ativo Direção da transcrição Transcrição pela RNA polimerase na Echerichia coli RNA polimerase DNA dependente

2 -RNA Polimerase DNA Dependente Fita 5’-3’: fita codificadora Fita 3’-5’: fita molde RNA

2 -RNA Polimerase DNA Dependente Fita 5’-3’: fita codificadora Fita 3’-5’: fita molde RNA transcrito O RNA é transcrito a partir da fita molde e sua sequência é idêntica a da fita codidificadora (U/T)

2 -RNA Polimerase DNA Dependente Polimerização mediada pela RNA polimerase

2 -RNA Polimerase DNA Dependente Polimerização mediada pela RNA polimerase

3 -Região Promotora Espaçadores TTGACA Região -35 N 17 TATAAT N 6 Região a

3 -Região Promotora Espaçadores TTGACA Região -35 N 17 TATAAT N 6 Região a ser transcrita Região -10 Sítio de início de transcrição (+1) Sequência conservada de promotores de E. coli reconhecidos pela subunidade sigma 70

2 -RNA Polimerase DNA Dependente Genes essencias para a manutenção celular – house keeping

2 -RNA Polimerase DNA Dependente Genes essencias para a manutenção celular – house keeping genes Genes regulados por nitrogênio Genes relacionados com a adaptação ao estresse térmico Genes relacionados com quimiotaxia e síntese de flagelos Genes relacionados com a adaptação ao estresse térmico extremo Subunidades sigma descritas em E. coli [Sadhale P, Verma J and Naorem A 2007 Basal transcription machinery: role in regulation of stress reponse in eukaryotes; J. Biosci. 32 569– 578]

3 -Região Promotora • Eficiência da ligação da RNA polimerase ao promotor – Sequência

3 -Região Promotora • Eficiência da ligação da RNA polimerase ao promotor – Sequência nucleotídica do promotor – Espaçamento entre as regiões -10 e -35 – Distância entre as regiões -10 e -35 e o sítio de início de transcrição

3 -Região Promotora Reconhecimento do promotor pela subunidade sigma em E. coli [Sadhale P,

3 -Região Promotora Reconhecimento do promotor pela subunidade sigma em E. coli [Sadhale P, Verma J and Naorem A 2007 Basal transcription machinery: role in regulation of stress reponse in eukaryotes; J. Biosci. 32 569– 578]

4 -Transcrição em E. coli Etapa de início da transcrição

4 -Transcrição em E. coli Etapa de início da transcrição

4 -Transcrição em E. coli Etapa de elongação da transcrição

4 -Transcrição em E. coli Etapa de elongação da transcrição

4 -Transcrição em E. coli Etapa de término da transcrição

4 -Transcrição em E. coli Etapa de término da transcrição

4 -Transcrição em E. coli Etapa de término da transcrição independente da proteína ρ

4 -Transcrição em E. coli Etapa de término da transcrição independente da proteína ρ (ro)

5 -m. RNA policistrônico Decodificação de vários genes a partir de um único m.

5 -m. RNA policistrônico Decodificação de vários genes a partir de um único m. RNA

Transcrição do RNA em Organismos Eucariotos 1 -Aspectos gerais 2 -Complexo de iniciação 3

Transcrição do RNA em Organismos Eucariotos 1 -Aspectos gerais 2 -Complexo de iniciação 3 -Processamento Pós-Transcricioanal 4 -DNA polimerase RNA dependente

1 -Aspectos gerais m. RNA monocistrônico

1 -Aspectos gerais m. RNA monocistrônico

1 -Aspectos gerais Tipos de RNA polimerase em eucariotos • RNA polimerase I –

1 -Aspectos gerais Tipos de RNA polimerase em eucariotos • RNA polimerase I – Transcrição de r. RNA • RNA polimerase II – Transcrição de m. RNA • RNA polimerase III – Transcrição de t. RNA, r. RNA e RNAs reguladores

1 -Aspectos gerais Seqüências reguladoras Seqüência TATA Seqüência Inr Promotores reconhecidos pela RNA polimerase

1 -Aspectos gerais Seqüências reguladoras Seqüência TATA Seqüência Inr Promotores reconhecidos pela RNA polimerase II de eucariotos.

2 -Complexo de iniciação Dobramento da duplahélice quando associada a proteína TBP Fatores gerais

2 -Complexo de iniciação Dobramento da duplahélice quando associada a proteína TBP Fatores gerais de transcrição (TF) Reconhecimento da região promotora pela TBP (Proteína Ligante da Região TATA)

2 -Complexo de iniciação Domínio N-terminal Inr Fatores gerais de transcrição (TF) Reconhecimento da

2 -Complexo de iniciação Domínio N-terminal Inr Fatores gerais de transcrição (TF) Reconhecimento da região promotora pela TBP (Proteína Ligante da Região TATA)

2 -Complexo de iniciação Interação da RNA polimerase II com o promotor TFIIF: posiciona

2 -Complexo de iniciação Interação da RNA polimerase II com o promotor TFIIF: posiciona a RNA polimerase ao promotor e ao sítio Inr

2 -Complexo de iniciação Sítio de ancoragem para TFIIH Helicase e fosforilação do domínio

2 -Complexo de iniciação Sítio de ancoragem para TFIIH Helicase e fosforilação do domínio C-terminal de RNA Pol II Conclusão da etapa de iniciação

3 -Processamento Pós-Transcricional Processamento do prém. RNA eucarioto

3 -Processamento Pós-Transcricional Processamento do prém. RNA eucarioto

3 -Processamento Pós-Transcricional 7 -metilguanilato Ligação 5’-5’ fosfato Estrutura do quepe 5’ metilado do

3 -Processamento Pós-Transcricional 7 -metilguanilato Ligação 5’-5’ fosfato Estrutura do quepe 5’ metilado do m. RNA de eucariotos

3 -Processamento Pós-Transcricional Ponto de forquilha Sítio de corte e emenda 5’ Sítio de

3 -Processamento Pós-Transcricional Ponto de forquilha Sítio de corte e emenda 5’ Sítio de corte e emenda 3’ Região rica em bases pirimidinas Seqüências conservadas que regulam o splicing nos pré-m. RNAs de eucariotos

3 -Processamento Pós-Transcricional 1 a reação de transesterificação Mecanismo geral do splicing 2 a

3 -Processamento Pós-Transcricional 1 a reação de transesterificação Mecanismo geral do splicing 2 a reação de transesterificação

3 -Processamento Pós-Transcricional Reconhecimento dos sinais de poli(A) por fatores protéicos Clivagem e poliadelilação

3 -Processamento Pós-Transcricional Reconhecimento dos sinais de poli(A) por fatores protéicos Clivagem e poliadelilação do prém. RNA eucariótico Ligação da poli(A) polimerase (PAP)

3 -Processamento Pós-Transcricional Poliadenilação lenta (≈ 12 resíduos) Clivagem no sítio de poli(A) Clivagem

3 -Processamento Pós-Transcricional Poliadenilação lenta (≈ 12 resíduos) Clivagem no sítio de poli(A) Clivagem e poliadelilação do prém. RNA eucariótico

3 -Processamento Pós-Transcricional PABII: regula a atividade da enzima poli(A) polimerase Proteína II de

3 -Processamento Pós-Transcricional PABII: regula a atividade da enzima poli(A) polimerase Proteína II de ligação à poli(A) PABII Clivagem e poliadelilação do pré-m. RNA eucariótico

Quando não mencionado, as figuras apresentadas foram retiradas, com ou sem modificações, das seguintes

Quando não mencionado, as figuras apresentadas foram retiradas, com ou sem modificações, das seguintes referências: 1. LODISH, H; DARNELL, J. E. e BALTIMORE, D. 2005. “Biologia Celular e Molecular”, 5ª edição. Artmed Editora SA. Porto Alegre-Brasil. (www. whfreeman. com/lodish) 2. LEHNINGER, A. L. NELSON, D. L e COX, M. M. 2000. “Principles of Biochemistry”. 3ª Edition, Worth Publitions.