MANEJO DE ANIMALES DE LABORATORIO Laboratorio de Fisiologia

MANEJO DE ANIMALES DE LABORATORIO Laboratorio de Fisiologia 1 Facultad de Medicina UAEM

Historia Siglo III AC. Persia (criminales) 1452 Leonardo Da Vinci (perros y gatos) Santo Tomas de Aquino XIII (los animales no tienen derechos, no sienten es una reacción autonoma) Siglo XIX Gran Bretaña (cuidado de animales)

Alojamiento (Bioterio) Lugar físico donde se alojan, crían y utilizan animales de laboratorio que cuentan con una calidad genética y microbiológica definida.

VESTIDORES ÁREA ADMINISTRATIVA REPRODUCCIÓN ESTERILIZACIÓN INCINERACIÓN BODEGAS CONEJOS RATAS RATONES DESTETE ALOJAMIENTO EXPERIMENTACIÓN

Temperatura ~27°C Humedad 55 +/- 10% Recambio de aire c/8 horas Iluminacion 12 por 12. Sin ruidos

Micro ambiente CAJA DE POLIPROPILENO

Principio de las tres R de la experimentación. Russell y Burch (1959) Reducir, al máximo el número de animales utilizados en investigación. Reemplazar, siempre que sea posible el animal de experimentación por otro modelo experimental. Refinar, los métodos y técnicas utilizados de modo que produzcan al animal el menor sufrimiento posible.

Ratón de laboratorio TAXONOMÍA Clase: Mammalia Familia: Muridae Género: Mus Especie: Mus musculus.

Clasificación microbiológica Categoría I: animal haloxénico (convencional) Categoría II: animal miroxénico. ( germenes especificos) Categoría III: animal heteroxénico (libre de gérmenes patógenos) Categoría IV: animal axénico (libre de gérmenes)

Cepas BALB/c. J BALB/c. By. J B 6 D 2 F 1/J C 3 H/He. J C 57 BL/6 J CBA/J DBA/2 J FVB/NJ NOD. CB 17 -Prkdcscid/J NOD/Shi. Lt. J

Para metros biológicos del ratón Adulto 25 a 35 gr. Peso al nacimiento 1 -2 gr. Temperatura 37. 6 Frecuencia cardiaca 310 a 470 ppm Frecuencia respiratoria 38 a 110 rpm Esperanza de vida 2 anios. Madurez sexual 1 mes. Gestacion 20 dias. Crias 12. Canivalismo comun. Glucosa 106 – 278 mg/dl.

Orina

ANATOMÍA General mamiferos pequenos Cavidad oral Sólo los incisivos tienen un crecimiento continuo. No tienen caninos. No tienen premolares. Dientes amarillos. Los incisivos inferiores son muy largos.

ALIMENTACIÓN Ad libitum. Complementarlas con frutas y verduras frescas. . Recipientes o suelo de la jaula. Coprofágicos. La coprofagia mejora la absorción de vitamina B y vitamina K. Siempre deben tener agua fresca y en bebederos colgados. La fibra no es tan importante.

Determinación del sexo

Ventajas de su uso como animal de laboratorio De fácil cuidado y mantenimiento, por su pequeño tamaño. Bajos costo de manutención. Cepa definida. Diversidad de características especificas que sirven como modelo. Eficiencia reproductiva. Por su vida relativamente corta es excelente para su uso en ensayos crónicos de toxicología, microbiología, virología, farmacología, etc. Corto tiempo de generación.

Desventajas Dificultad en la recolección de material biológico. Dificultad la administración de drogas. Dificultad en las técnicas quirúrgicas.

Traslado de la jaula Para transferir un ratón de su jaula a otra, debe de tomarse de la base de la cola, usando guantes.

Técnica para la manipulación de un ratón

Anestésicos mas usados

Vías de administración Las formas más habituales son: � Enteral. Vía Mediante el aparato digestivo oral. Con tabletas, comprimidos o jarabes. Vía rectal. Supositorios.

Vía Oral

� Vía tópica. Se aplica en la zona donde va a actuar. Inhalada (eutanasia) Sobre la piel o la zona afectada. En cremas o parches. (pruebas de alergia) � Parenteral Inyección inyectada. intravenosa. Inyeccion intraperitoneal. (anestesia) Inyección intramuscular. Inyección subcutánea. (Inoculaciones)

Vía intramuscular � La inyección intramuscular, generalmente es hecha en la espalda o en la parte superior del muslo.

Vía intraperitoneal

Vía subcutánea

Vía intravenosa

Extracción de sangre Retro orbital

Intracardiaca

Corte de cola

Eutanasia

PREGUNTAS

PRACTICA OBJETIVOS El alumno aprenderá a manipular correctamente roedores pequeños. Medirá adecuadamente algunos parámetros físicos como: Temperatura Frecuencia cardiaca Frecuencia respiratoria Peso Conocerá las vías de administración en animales de laboratorio más usuales.

MATERIAL Ratones pequeños Balanza Estetoscopio Termómetro clínico Sonda para vía oral Jeringa de 5 ml Jeringa de insulina Guantes para cirujano Pentobarbital sódico Solución salina isotónica

PROCEDIMIENTO Pesar a los ratones utilizando la balanza, sujetándolo de la cola y colocarlo en la canastilla. Determinar los siguientes valores fisiológicos Sexo Peso Edad aproximada Frecuencia cardiaca Frecuencia respiratoria Temperatura

Administrar por vía subcutanea. 5 ml de solución fisiológica por medio de la sonda de administración oral. Administrar por vía intraperitoneal 40 mg de pentobarbital sódico por kg de peso. Administrar por via oral. 5 ml de solucion fisiologica.

“La cuestión no es si los animales pueden razonar … ni tampoco si pueden hablar… sino ¿pueden sufrir? ” (Jeremy Bentham, 1780).