La rata como animal de experimentacin en microciruga
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La rata como animal de experimentación en microcirugía Conceptos generales Jesús Gracia Romero. F. E. A. Cirugía Infantil. Hospital Miguel Servet.
La rata como animal de experimentación en microcirugía • Práctica en dedo de guante y gasa. • Práctica de disección "in vivo" • Disección aorta‑cava / Disección nervio ciático / Disección de carótidas • Cirugía vascular: - Anastomosis termino‑terminal de aorta abdominal y carótida - Término‑terminal de arteria/vena femoral - Término‑lateral arterial (carótidas) y venosa (porto‑cava) • Cirugía nerviosa
La rata como animal de experimentación en microcirugía • Utilización del microscopio y de la gafa‑lupa • Instrumental. Manejo. Mantenimiento y cuidados • Materiales de sutura • Disposición general del material, postura del cirujano, etc. • Anestesia del animal. Colocación en la tablilla • Vías de abordaje. Colocación de separadores. Posibilidades quirúrgicas
La rata como animal de experimentación en microcirugía • Papel del veterinario • Espacio quirúrgico adecuado. Área subdividida en otras especificas: jaulas de espera o de recuperación. . • Instrumentos estériles. Desinfección de las tablas, etc. • Evaluación prequirúrgica. Tiempo de ayuno. • Preparación del animal. Lavado, rasurado amplio, aplicación de antiséptico. Vigilar la aplicación de soluciones alcohólicas. Aplicación de paños estériles. Preparación del cirujano: Lavado de manos. Guantes. Mascarilla. Gorro. • Marcado del animal • Valoración del animal durante la cirugía. Sangrado. Profundidad de la anestesia. • Temperatura corporal. Botellas de agua caliente. Tablilla calefactada. Lavados con suero caliente. • Observación durante el despertar. Mantenerlo caliente. Lámpara de calor. • Historia clínica de cada animal, en su jaula. • Analgesia postoperatoria
La rata como animal de experimentación en microcirugía • ANESTESIA - Por inhalación: éter anestésico - I. M. (ketamina 50 mg. (5 cc), valium 10 mg (2 cc) y atropina 1 mg. (1 cc). 1 cc x 300 g. de rata - Intraperitoneal. Ketamina 30 mg/kg + Valium 4 mg/kg + Atropina 1 mg/kg ó Pentotal 40 mg/kg + Atropina 1 mg/kg.
La rata como animal de experimentación en microcirugía • MATERIAL MICROQUIRÚRGICO - Pinzas de relojero rectas - Pinzas de relojero anguladas 45º (sirve de porta) - Tijeras tipo Wescott - Microclamps vasculares - Suturas 9 y 10 ceros.
Cada alumno debería disponer de: • MATERIAL QUIRÚRGICO - Pinzas de relojero rectas - Pinzas de relojero anguladas 45º - Tijeras microquirúrgicas tipo Wescott - Microclamps vasculares - Suturas 9 y 10 ceros Tablilla-soporte de la rata. Esparadrapo de fijación. Jeringa con aguja de insulina. Separadores “automáticos”. Bolitas de algodón para hemostasia. Gasas. Vaso-recipiente para el instrumental. Pinza de disección con dientes. Tijera “macro”. Microscopio ó gafa lupa.
Vías de abordaje:
Sutura arterial termino-terminal • Evitar pinzar todo el espesor del vaso. Coger la adventicia • Disecar y ligar las ramas colaterales • Disecar suficiente longitud de vaso para poner los clamps • Vaciar la sangre queda en las bocas • Seccionar la adventicia traccionando de ella a modo de tienda de campaña • Dilatar la luz del vaso, sin desgarrar la intima • Colocar debajo un trocito de goma de globo para contrastar • Seccionar el vaso • suturar
Sutura arterial termino-terminal
Sutura arterial termino-terminal • Aproximar las bocas, aproximando el clamp • Afrontar lo mas posible las bocas • Primer punto en cara antero‑lateral. Nos servirá para traccionar de el. Los nudos deben hacerse planos • Segundo punto a 120 grados del primero • Uno o varios puntos entre los dos primeros • Después se rota el clamp 180 grados, para suturar la cara posterior • Se dan puntos promediando
Sutura arterial terminoterminal
Sutura arterial termino-terminal Para valorar la sutura • Quitar el clamp • Hacer compresión suave, 5 minutos • Vaciar un segmento del vaso distalmente a la anastomosis, con dos pinzas • Observar el relleno del segmento vaciado
Sutura arterial terminoterminal
Anastomosis porto-cava Sutura nerviosa
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