Infecciones gastrointestinalesGEA Dra Avelina Chinchilla Rodrguez Mortalidad 50

Infecciones gastrointestinales(GEA). Dra. Avelina Chinchilla Rodríguez

Mortalidad 50 % en < 5 años GEA Muy frecuentes Solo superadas por ITR Procesos banales que se pueden complicar Enfermedad de base En la infancia y a nivel mundial son la causa más importante de morbimortalidad Edades extremas

Clínica de la GEA §Nauseas §Vómitos §Fiebre §Dolor abdominal Diarrea Acuosa o secretora Invasiva o disentería

Diarrea acuosa V. cholerae E. coli enterotoxigénico Fiebre Dolor abdominal Tenesmo Toxinas Intestino delgado Deshidratación

Diarrea invasiva Invasión Citotoxinas Shigella sp Deshidratación Fiebre Dolor abdominal Tenesmo Daño en la mucosa colónica Moco, sangre, pus

Toxiinfección alimentaria Diarrea del viajero Múltiples afectados que han compartido un alimento de la misma procedencia Personas que viajan desde países desarrollados a otros en vías de desarrollo Excepción La intoxicación por T. botulínica Produce un cuadro neurológico E. coli (enterotoxigénico) (enteroagregativo)

H. pylori Helmintos Etiología Bacterias Campylobacter sp Salmonella sp Aeromonas sp Yersinia sp H. alvei Shigella sp E. coli Vibrio sp P. Shigelloides C. difficile Virus Rotavirus Norovirus Adenovirus Astrovirus Sapovirus Parásitos (protozoos) B. hominis G. lamblia E. histolytica Cryptosporidium sp I. belli B. coli Microsporidium sp

Estacionalidad Bacterias Parásitos (protozoos) Predominio verano-otoño Virus Predominio invierno

Mecanismo patogénico de los principales microorganismos Acuosa E. coli (EPEC, ETEC) V. cholerae C. difficile Virus G. lamblia Invasiva E. coli (EIEC, EHEC) Shigella sp Salmonella sp Y. enterocolitica E. histolytica

Recogida de muestra Coprocultivo Estudio virus Estudio CD Una muestra Recipiente estéril de boca ancha (sin conservante) En cuanto se inicia el cuadro clínico Test de Graham (E. vermicularis) Parásitos Muestras seriadas (3) Miniparasep ® (formalina)

Métodos diagnóstico Moleculares (RT-PCR) Tradicionales Examen Microscópico (parásitos) Coprocultivo Bacterias Todo tipo de microorganismos IC Virus CD (GDH) No excluyentes (complementarios)

Periodo 01/10/2015 30/09/2016

Diagnóstico GEA Clínica independiente del microorganismo implicado Alta prevalencia infecciones mixtas Imposibilidad algoritmo secuencial Estudio de virus Coprocultivo Simultáneamente

Grupo A GG I y II Ser. 1 Ser. 40, 41

Estudio de virus (IC) Sen. 94 -99 % Espe. >99%

Coprocultivo Siembra de heces en diferentes medios selectivos y diferenciales para aislar los patógenos bacterianos específicos del tracto intestinal

Coprocultivo Abundancia de flora saprofita. Discriminación bacterias patógenas. Altos requerimientos de ciertos microorganismos Protocolo específico. Gran variedad de medios de cultivo. El proceso puede ser largo. Tiene algunas limitaciones

¿Qué patógenos Buscamos? Frecuentes Campylobacter sp Salmonella sp A. hydrophila Menos frecuentes Hafnia alvei Y. enterocolitica Shigella sp E. coli diarreagénico P. shigelloides Vibrio sp

Principales tipos de E. coli diarreagénicos Gen ipa. H 1 y 2

E. coli diarreagénico § Componente principal de la microbiota intestinal. § Es imposible distinguir un E. coli patógeno de otro saprofito mediante pruebas bioquímicas. §Poca utilidad del coprocultivo. Diagnóstico molecular Genes asociados a factores de virulencia sxt-1/sxt-2 EHEC ipa. H EIEC ST/LT ETEC

Siembra del coprocultivo 1 er día 2º día Agar sangre Mac Conkey Salmonella-Shigella Campylobacter Yersinia Selenito Cromoagar salmonella

Valoración 1 er día Lactosa Negativas No se suele trabajar Colonias Rojas SH 2 Positivo

Valoración (cont. ) Lactosa negativo Shigella sp Hafnia alvei E. coli P. shigelloides Orientación No E. coli (color azulado o anaranjado) E. coli ? ? Descartar NP No E. coli (color blanco) ID bioquímica

Valoración (cont. ) Colonias productoras de SH 2 Salmonella sp Colonias moradas cromoagar salm. ID bioquímica Orientación Azulada o anaranjada Blanca Descartar NP

Valoración (cont. ) 2º día Campy Colonias moradas Grises Pequeñas Extendidas Aceitosas

Valoración (cont. ) Campylobacter sp C. jejuni Oxidasa Colonias grises Colonias extendidas Gram Hipurato

Valoración (cont. ) A. hydrophila Colonias rojas En agar yersinia Colonia amarillo mucoso oxidasa positivo AS ID bioquímica Colonia puntiforme ureasa positivo (TA) Y. enterocolitica

Enfermedad asociada C. difficile (EACD) Patogenia 1 - Colonización más alteración dela microbiota. 3 -Producción de toxinas A y B codificadas por los genes tcd. A y tcd. B del locus Pa. Loc. 4 -Otros factores Espectro de la EACD Portador asintomático Diarrea de leve a moderada Colitis seudomembranosa Colitis fulminante Íleo parálitico Megacolon tóxico Toxina binaria (no Pa. Loc) Adhesinas, fimbrias, cápsula, etc.

EACD Factores predisponentes § Exposición a antibióticos. § Estancia hospitalaria prolongada. § Ingreso en la UMI. § Edad avanzada (>65 años). § Contacto con individuo infectado. § Enfermedad subyacente (EII, inmunosupresión, etc). § Otros: antiácidos, procedimientos invasivos Clindamicina Cefalosporinas y otros Betalactámicos Fluoroquinolonas Estudio EACD no indicado Pacientes <= 24 meses: § 50% pueden ser portadores §Baja frecuencia

Estudio de CD GDH Neg PCR (gen tcd. B) + Detección T. CD Pos.

Cifras de la EACD GDH 462 - 90 % Año 2016 + 10 % - 56 % Tox. CD 52 + 44 %

Bibliografía §Míriam Alvarez Martínez y col. Procedimiento 30. Diagnóstico microbiológico de las infecciones gastrointestinales. SEIMC. PROCEDIMIENTOS EN MICROBIOLOGÍA. 2008. §Luis Alcalá Hernández y col. Procedimiento 53. Diagnóstico microbiológico de la infecion por Clostridium difficile. SEIMC. PROCEDIMIENTOS EN MICROBIOLOGÍA. 2015. §Juan B. Bellido Blasco. Epidemiología de las gastroenteritis agudas víricas. Aspectos actuales. SOCIEDAD ESPAÑOLA DE EPIDEMIOLOGÍA. 2007.