Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej ICHTJ gwne kierunki
Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej ICHTJ główne kierunki badań Anna Lankoff Instytut Chemii i Techniki Jądrowej Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej ul. Dorodna 16, 03 -195 Warszawa tel. : 22 -504 -1118, fax: 22 -504 -1341, www. ichtj. waw. pl/POIG/cerad
Tematyka badawcza realizowana w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej 1. Pracownia Dozymetrii Biologicznej (akredytacja w 2014 roku) ü Cytologiczne i biochemiczne wskaźniki oceny narażenia ludności na promieniowanie jonizujące. 2. Pracownia Radiobiologii Komórkowej ü Komórkowe i molekularne mechanizmy odpowiedzi na promieniowanie jonizujące. ü Czynniki modulujące działanie promieniowania jonizującego na poziomie komórkowym i molekularnym ü Poszukiwanie nowych radiofarmaceutyków dla diagnostyki i terapii 3. Pracownia Cytogenetyki i Genotoksykologii üSygnalizacja komórkowa w obronie przed skutkami stresu oksydacyjnego üCytotoksyczne i genotoksyczne efekty działania nanomateriałów
Personel Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej Pracownicy samodzielni: Asystenci: Prof. dr hab. Marcin Kruszewski– kierownik Centrum Mgr Tomasz Stępkowski Prof. dr hab. Irena Szumiel Mgr Iwona Wasyk Dr hab. Anna Lankoff, prof. ICHTJ Mgr Katarzyna Sikorska Adiunkci: Pracownicy Badawczo-Techniczni: Dr Teresa Bartłomiejczyk Mgr Iwona Buraczewska Dr Kamil Brzóska Mrg Teresa Iwaneńko Dr Iwona Grądzka Elżbieta Przygoda Dr Hanna Lewandowska-Siwkiewicz Dr Sylwia Męczyńska-Wielgosz Administracja: Dr Barbara Sochanowicz Wiesława Łodyga Dr Sylwester Sommer Dr Maria Wojewódzka Personel pomocniczy: Dr Grzegorz Wójciuk Barbara Kapica Dr Karolina Wójciuk
Główna aparatura badawcza w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej Cyfrowy sorter komórkowy BD FACSAria III Cyfrowy cytometr przepływowy BD LSRFortessa Mikroskop konfokalny NIKON Eclipse Ti – E/A 1 RSi z systemem PFS (Perfict Focusing System)
Główna aparatura badawcza w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej 2 laboratoria do pracy w warunkach sterylnych, wyposażone w komory laminarne (Nuair), inkubatory z regulacja CO 2 i O 2 (Nuair), mikroskop odwrócony, wirówki, licznik komórek Countess Inkubator z wytrząsaniem Excella E 24 (New Brunswick Scientific) Fast Real Time PCR System (Applied Biosystems 7500)
Główna aparatura badawcza w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej Spektrofotometr UV-Vis 50 Bio (Varian) Fluorescencyjny czytnik mikropłytek Infinite F 200 / M 200 (Tecan) Fluorescencyjny mikroskop odwrócony (Nikon)
Aparatura badawcza w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej System do analizy obrazu METAFER połączony z automatycznym mikroskopem Zeiss System analizy obrazu – Comet Assay IV Źródło promieniowania X 250 k. V (Xylon International Smart 200 -E irradiator, Xylon, USA)
Metody badawcze stosowane w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej • metody hodowli komórkowych • metody cytogenetyki klasycznej • metody cytogenetyki molekularnej • metody biologii molekularnej • metody cytometryczne
Główne metody badań stosowane w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej Hodowle komórkowe in vitro (limfocyty krwi obwodowej człowieka, ludzkie i zwierzęce nowotworowe linie komórkowe , mutanty defektywne w genach odpowiedzialnych za naprawę DNA). Test aberracji chromosomowych, pozwalający na analizę strukturalnych i liczbowych uszkodzeń chromosomów. Test mikrojądrowy, pozwalający na analizę klastogennych (pęknięcia nici DNA) uszkodzeń DNA.
Główne metody badań stosowane w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej Test mikrojądrowy w wersji FISH (Fluorescence In Situ Hybridisation), pozwalający na analizę aneugennych (utrata chromosomu/ów na skutek wadliwego działania wrzeciona podziałowego) uszkodzeń DNA. Metody immunofluorescencyjne, pozwalające na analizę struktur komórkowych (np. mikrotubul i wrzeciona podziałowego). Test klonogenny, pozwalający na analizę przeżywalności komórek i ich zdolność do tworzenia kolonii.
Główne metody badań stosowane w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej Test kometowy (Comet assay), pozwalający na analizę poziomu uszkodzeń DNA w pojedynczych komórkach oraz na analizę kinetyki naprawy uszkodzonego DNA. Cytometria przepływowa, pozwalająca na wieloparametrową ocenę struktury i funkcji komórek oraz wydzielanych przez nie substancji. Test gamma-H 2 AX, pozwalający na analizę popromiennych ognisk naprawczych w uszkodzonym DNA.
Główne metody badań stosowane w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej Metoda PCR (Polymerase Chain Reaction) i Real Time PCR, pozwalające na powielania łańcuchów DNA oraz na określenie ilości matrycy użytej do reakcji, jak również ilości powstającego produktu. Metoda m-FISH (multiplex fluorescence in situ hybridization), pozwalająca na analizę uszkodzeń DNA (np. translokacji) Metoda RICA (Rapid Interphase Chromosome Assay), ( pozwalająca na analizę uszkodzeń DNA w interfazalnych jądrach poprzez malowanie terytoriów chromosomowych przy pomocy hybrydyzacji in situ (FISH)
Główne metody badań stosowane w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej Mikroskopia konfokalna, pozwalająca na uzyskanie wysokiej jakości obrazów , rekonstrukcji obrazów w trzech wymiarach oraz badania dynamiki procesów komórkowych (filmy poklatkowe) Metoda ELISA (ang. enzyme-linked immunosorbent assay), pozwalająca na wykrycie określonych białek w badanym materiale z użyciem przeciwciał Metody transfekcji (wprowadzenia obcego DNA lub RNA do ( komórki eukariotycznej. Zastosowanie m. inn. białka GFP (ang. green fluorescent protein)
Projekty badawcze realizowane w Centrum Radiobiologii i Dozymetrii Biologicznej ü Rozwój metod zapewniania bezpieczeństwa jądrowego i ochrony radiologicznej dla bieżących i przyszłych potrzeb energii Jądrowej. Projekt realizowany w ramach Strategicznego projektu badawczego: Technologie wspomagające rozwój bezpiecznej energii jądrowej. (Projekt nr SP/J/6/143 339/11. Finansowanie z NCBi. R Akredytacja procedury wyznaczania pochłoniętej dawki promieniowania gamma i w oparciu o pomiar częstości występowania chromosomów dicentrycznych w limfocytach krwi obwodowej osoby narażonej oraz opracowanie założeń utworzenia sieci takich laboratoriów Określenie przydatności do oceny narażenia na promieniowanie jonizujące zmian transkryptomu w komórkach krwi obwodowej. Określenie przydatności do oceny narażenia na promieniowanie jonizujące metody przedwczesnej kondensacji chromatyny (PCC) połączonej z metodą hybrydyzacji in situ (FISH). ü Opracowanie wieloparametrowego testu „triage” do oceny narażenia ludności na promieniowanie jonizujące. (Projekt badawczo-rozwojowy nr UDA-POIG 01. 03. 01 -14 -054/09. Finansowanie z Europejskiego Funduszu Rozwoju Regionalnego ü Białko PGAM 5 jako element sygnalizacji pomiędzy szlakiem odpowiedzi na stres oksydacyjny NRF 2/KEAP 1 a apoptozą i autofagią związaną z aktywacją kinazy ASK 1. Sprawdzenie hipotezy i implikacje w chorobie Parkinsona. (Grant IUVENTUS PLUS ustanowiony MNi. SW nr: IP 2011052071 ü Fizykochemiczne oraz biochemiczne badania wybranych biologicznych przenośników tlenku azotu. Zależność między strukturą molekularną i rozkładem ładunku elektronowego a aktywnością biologiczną nitrozylowych kompleksów żelaza. (Projekt badawczy nr 2012/07/D/ST 4/02177. Finansowanie z NCN. üAnalog Des-acyl Greliny jako nośnik radionuklidów i potencjalny radiofarmaceutyk (Projekt badawczy nr UMO 2011/01/N/ST 5/05580. Finansowanie z NCN
Plany badawcze Badanie komórkowych i molekularnych mechanizmów odpowiedzi komórek macierzystych na promieniowanie jonizujące, z uwzględnieniem różnych rodzajów promieniowania
Dziękuję za uwagę…
- Slides: 16